詳細介紹
由于嚙齒類動物與人類之間存在巨大的種屬差異基礎研究成果不能有效地轉化為臨床應用。靈長類動物與人類的親緣關系密切生理特征也人類因此靈長類動物研究成果可望直接轉化為臨床應用。而大動物腦立體定位儀是創建人類神經疾病動物模型的重要基礎設備。
大動物腦立體定位儀采用平行滑軌式設計同樣是利用動物顱骨表面的某些解刨標志（如矢狀縫外耳道的中心軸眶下緣中心部前鹵中心等部位）與腦表面及深部某一結構（如腦核、前連合等）的相對恒定關系來確定大動物腦內部組織的位置從而完成相關的實驗研究。
腦立體定位儀又稱腦固定裝置（Stereotaxic Apparatus）它是利用動物顱骨外面的標志或其它參考點所規定的三度坐標系統來確定皮層下某些神經結構的位置是神經解剖、神經生理、神經藥理和神經外科等領域內的重要研究設備可用于對神經結構進行定向的注射、刺激、破壞、引導電位等操作可用于帕金森氏病、癲癇紅外腦內腫瘤等動物模型的建立也可用于學習記憶腦內神經干細胞移植腦缺血等方面的研究。
產品特點
1)功能完整性平行軌道式大動物定位儀具有標準腦立體定位儀的所有功能采用三線螺紋定位定位過程平滑線性適用于絕大多數大動物腦部的科學研究。
2)多樣化配置可根據需求的不同進行多種配置如單臂型雙臂型四臂型或加裝位移傳感器的數顯型等最多可以在兩個平行軌道上安裝六個操作臂可以實現在一個動物上多個探針獨立定位。
3)外接設備的多樣性夾持器部件可外接各種規格的探針、電極固定夾持器執行單元等。
4)操作臂鎖定角度的靈活性在進行大動物腦立體定位操作時有時會需要從動物的側面或是下面來進行操作這時就需要將操作臂傾斜一定角度可靠靈活的鎖定對于這種操作來說至關重要。
5)高精度性操作臂可以控制左右和上下方向的移動通過楔形榫頭來進行前后控制位移范圍0-80mm精確度0.1mm；也可配置操作臂前后微調組件（型號51858）微調范圍0-25mm微調步進0.01mm。
6)的旋轉固定支架軌道可以進行360度旋轉適合各種角度的應用；軌道位移范圍-100至100mm精確度0.1mm。
7)游標卡尺式精度操作臂上下、左右以及平行軌道均采用游標卡尺讀數方式移 動精度均為100um。
設計的適配器滑槽可選擇不同的夾持適配器（如狗猴適配器、貓兔適配器）方便不同體重的大動物頭部固定。
鎖定可靠
在進行大動物腦立體定位操作時有時會需要從動物的側面或是下面來進行操作這時就需要將操作臂傾斜一定角度可靠的鎖定對于這種操作來說非常的重要。
調節
通過引導螺紋操作臂可以控制左右和上下方向的移動前后控制通過楔形榫頭來進行在每個方向上都可以移動80mm。通用關節則使操作者可以在上下或左右平面上讓夾持器的轉動可達90度。改進型的鎖定部件可以讓腦立體定位儀鎖定在任何角度而不發生滑動當然也提供了90度垂直方向的鎖定。
多功能
其它型號的動物適配器和耳棒都可以用到51800型大動物腦立體定位儀上。
移動平滑
標準型腦立體定位儀采用三線螺紋可實現很好的位置定位定位過程平滑線性。
可選前后微調組件
可選的51858組件可以25mm范圍內以10微米為步進前后微調。通過一個伸出的旋紐來控制導軌和操作避的前后移動。
貓/猴腦立體定位儀主要配置
· 兩個51804左邊操作臂
· 兩個51806右邊操作臂
· 一個51801平行導軌框架12英寸
· 一個51826貓/猴帶18°耳棒
· 一個51680通用型轉動支架
· 底座需另配
51850型狗腦立體定位儀
· 兩個51804左邊操作臂
· 兩個51806右邊操作臂
· 一個51851平行導軌框架14.75英寸
· 一個51852狗帶18 °耳棒
· 一個51680通用型轉動支架
· 底座需另配
型號規格
型號 描述 適用動物 5057 大動物單臂腦立體定位儀 狗、猴、兔、貓 5058 大動物雙臂腦立體定位儀 狗、猴、兔、貓 5061 大動物數顯單臂腦立體定位儀 狗、猴、兔、貓 5062 大動物數顯雙臂腦立體定位儀 狗、猴、兔、貓 5065 大動物腦立體定位儀底座 狗、猴、兔、貓 5072 數顯模塊套裝 通用/選配 5097 狗猴適配器 選配 5098 貓兔適配器 選配
根據需要有多種配置和型號可供選擇
M5059型雙臂大動物腦定位儀
M5060型四臂大動物腦定位儀
M5062型數顯雙臂大動物腦定位儀
比格犬、猴子夾持適配器
部分參考文獻
1. Albéri, L., Lintas, A., Kretz, R., Schwaller, B., & Villa, A. E. (2013). The calcium-binding protein parvalbumin modulates the firing 1 properties of the reticular thalamic nucleus bursting neurons. Journal of neurophysiology, 109(11), 2827-2841.
2. Sonati, T., Reimann, R. R., Falsig, J., Baral, P. K., O’Connor, T., Hornemann, S., Aguzzi, A. (2013). The toxicity of antiprion antibodies is mediated by the flexible tail of the prion protein. Nature, 501(7465), 102-106.
3. Ali, I., O’Brien, P., Kumar, G., Zheng, T., Jones, N. C., Pinault, D., O’Brien, T. J. (2013). Enduring Effects of Early Life Stress on Firing Patterns of Hippocampal and Thalamocortical Neurons in RatsImplications for Limbic Epilepsy. PLOS ONE, 8(6), e66962.
4. Bell, L. A., Bell, K. A., & McQuiston, A. R. (2013). Synaptic Muscarinic Response Types in Hippocampal CA1 Interneurons Depend on Different Levels of Presynaptic Activity and Different Muscarinic Receptor Subtypes. Neuropharmacology.
5. Bolzoni, F., B?czyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.
6. Bolzoni, F., B?czyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.
7. Babaei, P., Tehrani, B. S., & Alizadeh, A. (2013). Effect of BDNF and adipose derived stem cells transplantation on cognitive deficit in Alzheimer model of rats. Journal of Behavioral and Brain Science, 3, 156-161.
8. Gilmartin, M. R., Miyawaki, H., Helmstetter, F. J., & Diba, K. (2013). Prefrontal Activity Links Nonoverlapping Events in Memory. The Journal of Neuroscience, 33(26), 10910-10914.
9. Feng, L., Sametsky, E. A., Gusev, A. G., & Uteshev, V. V. (2012). Responsiveness to nicotine of neurons of the caudal nucleus of the solitary tract correlates with the neuronal projection target. Journal of Neurophysiology, 108(7), 1884-1894.
10. Clarner, T., Diederichs, F., Berger, K., Denecke, B., Gan, L., Van der Valk, P., Kipp, M. (2012). Myelin debris regulates inflammatory responses in an experimental demyelination animal model and multiple sclerosis lesions. Glia, 60(10), 1468-1480.
11. Girardet, C., Bonnet, M. S., Jdir, R., Sadoud, M., Thirion, S., Tardivel, C., Troadec, J. D. (2011). Central inflammation and sickness-like behavior induced by the food contaminant deoxynivalenolA PGE2-independent mechanism.Toxicological Sciences, 124(1), 179-191.
12. Hru?ka-Plocháň, M., Juhas, S., Juhasova, J., Galik, J., Miyanohara, A., Marsala, M., Motlik, J. (2010). A27 Expression of the human mutant huntingtin in minipig striatum induced formation of EM48+ inclusions in the neuronal nuclei, cytoplasm and processes. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.
13. Brooks, S., Jones, L., & Dunnett, S. B. (2010). A29 Frontostriatal pathology in the (C57BL/6J) YAC128 mouse uncovered by the operant delayed alternation task. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A10.
14. Yu, L., Metzger, S., Clemens, L. E., Ehrismann, J., Ott, T., Gu, X., Nguyen, H. P. (2010). A28 Accumulation and aggregation of human mutant huntingtin and neuron atrophy in BAC-HD transgenic rat. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.
15. Baxa, M., Juhas, S., Pavlok, A., Vodicka, P., Juhasova, J., Hru?ka-Plocháň, M., Motlik, J. (2010). A26 Transgenic miniature pig as an animal model for Huntington’s disease. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A8-A9.
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