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吡蟲啉(imidacloprid)ELISA試劑盒使用說明書
本試劑盒僅供研究使用。
1 使用目的:
本試劑盒用于農作物,蔬菜水果、血清和尿樣中吡蟲啉(imidacloprid)殘留的定量檢測。
2 實驗原理
本試劑盒采用競爭 ELISA 方法,在微孔板包被有吡蟲啉(imidacloprid)偶聯抗原,加入
吡蟲啉(imidacloprid)標準品或樣品,游離吡蟲啉(imidacloprid)與微孔條上預包被的吡蟲啉
(imidacloprid)偶聯抗原互相競爭抗吡蟲啉(imidacloprid)抗體酶標記物,用 TMB 底物顯色,
加入終止液后顏色由藍色變為黃色,用酶標儀在 450nm 波長下進行檢測,吸光值與樣品中
吡蟲啉(imidacloprid)含量成反比,通過標準曲線計算樣品中吡蟲啉(imidacloprid)的含量。
3 試劑盒組成
4 需要而未提供的材料
4.1 設備
4.1.1波長450nm酶標儀。
4.1.2粉碎機。
4.1.3量筒。
4.1.4振蕩器。
4.1.5漏斗。
4.1.6Whatman 或相當的濾紙。
4.1.7微量移液器。
4.2 試劑
4.2.1去離子水或蒸餾水。
4.2.2 甲醇。
5 貯存
6 注意事項
1
實驗結果。
7 工作液準備
8 樣品處理程序(樣品在提取過程中,要嚴格按說明書操作,提取過程中應準確稀釋,否則
會出現結果不準確,樣品應當保存在陰涼避光之處及冷藏保存)
8.1取10g粉碎的樣品,加 20ml 70%甲醇溶液
8.2強力振蕩3分鐘
8.3用Whatman 濾紙過濾
8.4取25µl處理后的樣品,加入25µl樣本稀釋液于反應孔中(樣本稀釋倍數為2)
9 酶免分析步驟
9.1 實驗須知
9.1.1 實驗開始前請將所有試劑于盒外充分恢復至室溫(25±2℃),時間約2小時。回溫至室
溫(25±2℃)后再取出微孔條,多余的微孔條重新密封立即于2~8℃干燥保存
注:一定保證回溫充分,否則影響檢測的度和準確度。
9.2 分析步驟
9.3 37℃溫浴30min (溫浴過程中不時輕拍反應板,可以減少雙孔誤差)
9.3.1 甩掉孔中液體,用洗液洗滌微孔板5次,zui后一次應在吸水紙上拍打以*除去孔中液
體。
2
9.4 反應
9.4.1 洗滌程序完成后,立即用微量移液器在每個微孔中先加入50µl顯色液A,再加 50µl顯
色液B;輕微晃動反應板使之*混勻
10 結果計算
10.1定量分析
10.1.1所獲得的每個濃度標準溶液和樣本吸光度值的平均值(B)除以*個標準(0標準)
的吸光度值(B0)再乘以,即百分吸光度值。
B—標準溶液或樣本溶液的平均吸光度值
B0—0µg/L標準溶液的平均吸光度值
10.1.2以吡蟲啉(imidacloprid)濃度的對數值為X軸,百分吸光度值為Y軸,繪制標準曲線圖。
根據樣品百分吸光度值,可從曲線上得到對應點的橫坐標,即為吡蟲啉(imidacloprid)濃度的
對數值,求得反對數即為測定液中吡蟲啉(imidacloprid)濃度C(ppb)
10.1.3由于樣品經過了預先稀釋,因此根據標準曲線所得出的樣品濃度一定要再乘以其稀釋
倍數。
10.2 半定量測定
10.1.1目測半定量測定:首先選擇一個適當的標準液與樣品同運行,根據樣品與標準品吸光
度值的高低比較,判斷樣品濃度值是小于還是大于標準值。
10.1.2儀器半定量測定:首先選擇一個適當的標準液與樣品同運行,根據樣品與標準品顏色
深淺比較,判斷樣品濃度值是小于還是大于標準值。
11 特異性
物質 交叉反應
吡蟲啉(imidacloprid)
12 試劑盒參數
本試劑盒檢測下限為0.05ppb
B0吸光度值應大于1.0
試劑盒吸光度板內誤差小于8%,板間誤差小于15%。
用本說明書提供的組織樣本提取方法回收率大于80%。
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試劑盒提供的標準曲線范圍為0.1ppb~8.1ppb。
14 分析限制
本試劑盒檢測為陽性的樣品應該用另一種方法如HPLC或GC/MS加以確證。
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