1.TSZelisa試劑盒包被抗原的選擇
包被抗原可分為天然蛋白、重組蛋白和小分子抗原三大類。天然蛋白需經純化才能用直接吸附法包被，對于含雜質較多的抗原可以采用間接捕獲法包被（先用能夠與目的抗原反應的物質如抗體直接吸附在酶標板上，再通過特異性反應使抗原固相化）。經純化的重組蛋白一般皆可直接包板。小分子抗原比如多肽以及一些小分子有機化合物，由于分子量太小，往往難于直接吸附在酶標板上，一般都先使其與無關蛋白質如BSA等偶聯，偶聯物吸附于固相載體上。
2.包被液的選擇
一般常用的是pH9.6的碳酸鹽緩沖液，如果包被的抗原在堿性條件下不穩定的話，TSZelisa試劑盒也可以使用pH7.2的磷酸鹽緩沖液。
3.包被溫度的選擇
通常是4-8度條件下過夜或者37度保溫2小時，建議4-8度條件下包被，有利于蛋白活性的保持。
4.包被濃度的選擇
包被的適濃度隨固相載體和包被物的性質變化，一般蛋白質的包被濃度為1-5ug/ml，要明確針對特定包被抗原的適包被濃度需要通過實驗來確定。
包板后需要封閉嗎？應該選擇什么樣的封閉體系？
封閉是否必要，取決于TSZelisa試劑盒的模式及具體的實驗條件。一般說來，雙抗體夾心法，只要酶標記物是高活性的，操作時洗滌*，不經封閉也可得到滿意的結果。而在間接法測定中，封閉一般是*的。

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TSZelisa試劑盒*化的包被條件

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