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貨號 | GOY-01S6897 |
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產品名稱 | 規格 | 檢測方法 | 貨號 |
咨詢 | 火焰光度法 | GOY-01S6897 |
商品介紹
測定意義 土壤鉀包括礦物鉀、緩效性鉀及速效性鉀,植物吸收土壤溶液鉀離子水平主要決定于土壤速效鉀含量,一般速效性鉀含量除受耕作、施肥等影響外還受土壤緩放性鉀貯量和轉化速率控制。 測定原理 混合酸高溫消解土壤樣品,采用火焰光度計測定樣品中的鉀含量。 自備實驗用品及儀器 消解儀、消化管、天平、烘箱、100目篩、移液管、濃硫酸、高氯酸、火焰光度計。 |
試劑的組成和配制:
提取液:液體 100mL×1 瓶,4℃保存;
試劑一:液體 5mL×1 瓶,4℃保存;
試劑二:液體 200μL×1 支,4℃保存;
試劑三:液體 4mL×1 瓶,4℃保存;
試劑四:粉劑×2 瓶,4℃保存。
所需的儀器和用品:
可見分光光度計、1mL 玻璃比色皿(光徑 1cm)、低溫離心機、移液器、研缽、冰和蒸餾水
四、超氧化物歧化酶(SOD)的測定:
建議正式實驗前選取 2 個樣本做預測定,了解本批樣品情況,熟悉實驗流程,避免實驗
樣本和試劑浪費!
1、樣本制備
① 組織樣本:
取約 0.1g 組織(水分充足的樣本可取 0.25g),加入 1mL 提取液,在 4oC 或冰浴進行
勻漿(或使用各類常見勻漿器)。4oC×12000rpm 離心 10min,取上清作為待測液。
【注】:若增加樣本量,可按照組織質量(g):提取液體積(mL)為 1:5~10 的比例進行提取
② 細菌/細胞樣本:
先收集細菌或細胞到離心管內,離心后棄上清;取約 500 萬細菌或細胞加入 1mL
提取液,超聲波破碎細菌或細胞(冰浴,功率 200W,超聲 3s,間隔 10s,重復 30 次);
12000rpm 4℃離心 10min,取上清,置冰上待測。
【注】:若增加樣本量,可按照細菌/細胞數量(10
4):提取液(mL)為 500~1000:1 的比例進行提取。 ③ 液體樣本:直接檢測;若渾濁,離心后取上清檢測。
注意事項:
1、試劑二為酶,不可冷凍,使用時在冰上放置。
2、對照管只需要做一管。
3、若對照管吸光值大于 1,建議將試劑二用蒸餾水稀釋 7 倍后使用(10μL 試劑二原液+60μL蒸餾水)。
4、SOD為什么有的樣本測定管大于對照管,對照管數值在什么范圍?對照管的范圍是 0.4-1。對照管吸光值過低可能是(1)試劑二或試劑四沒有現配現用;
(2)沒有按順序加試劑;(3)反應時間不夠,可以延長反應時間(反應時間 30min可以延長到 40min)。對照管吸光值過高可能是試劑二未按操作說明書稀釋相應倍數。
若出現測定管大于對照管,可能是樣本中雜質的影響太大,為了降低雜質的影響一般
將樣本提取上清液用蒸餾水或提取液稀釋 10倍后再測,通常可以使測定正常。
環唑 分析標準品正丁 99%Anti-C-PC /FITC 熒光素標記C-藻藍素/藻藍蛋白抗體IgG
環唑標準溶液 1.00mg/ml環己烷 Standard for GC, ≥99.9% (GC)Anti-C-Peptide( C-PEP )/FITC 熒光素標記C-肽抗體IgG
精喹禾靈 分析標準品,99.7%環己烷 AR,99.5%Anti-CPSA/FITC 熒光素標記鼠抗人復合前列腺特異性抗原單克隆抗體IgG
精喹禾靈環己烷 for HPLC, ≥99.9%Anti-CPSF4/CPSF30/FITC 熒光素標記剪切和多聚腺苷酸化特異性因子4抗體IgG
三唑磷 分析標準品,>97%(HPLC)環己烷 農殘級Anti-CPT1A/FITC 熒光素標記抗肉堿棕櫚酰基轉移1A抗體IgG
三環唑 分析標準品,99.3%環己烷 ACS, ≥99%Anti-CR/FITC 熒光素標記鈣結合蛋白抗體IgG
三環唑標準溶液100μg/ml,u=2%,溶劑:甲多聚甲 96%Anti-MO25 alpha/CAB39/FITC 熒光素標記鈣結合蛋白39抗體IgG
三環唑標準溶液10μg/ml,u=2%,溶劑:甲環己烷 ACS光譜級, ≥99.5% (GC)Anti-CRACC/Slamf7/CD319R/FITC 熒光素標記CD319抗體IgG
土壤全鉀含量測定火焰光度法檢測試劑盒牛脂多糖結合蛋白(LBP)免疫試劑盒*直銷
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測定步驟:
1、 酶標儀預熱30min以上,調節波長至450nm。
2、 試劑三的稀釋:將試劑三用蒸餾水稀釋50倍,用多少配多少。(試劑三和蒸餾水1:49稀釋。
3、 工作液配制:在試劑一加入100μl試劑二,充分混勻。配好的試劑4℃避光可保存一周。(若一次性測定樣本較少,可按照實際用量將試劑一和試劑二按照20ml:0.1ml的比例混勻配制)
4、 將一瓶試劑四用5ml蒸餾水溶解(溶解后一周內用完)。
5、 樣本測定(在96孔板中依次加入下列試劑)
選擇抗凝的注意點:
①、每一份樣本所加的抗凝劑的量要一致,同時所取的全血的量也要盡量一致;
②、收集抗凝全血后一定要輕輕顛倒,充分抗凝,防止部分血液未接觸到抗凝劑而導致凝固;
③、抗凝全血收集的血漿相對較多(1ml抗凝全血能分離出0.4~0.5ml血漿);
④、抗凝收集的血漿冷凍保存后,解凍時可能會出現絮狀渾濁,如有則需要離心去掉渾濁后用于測定。
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