正常肺細胞培養操作方法

取出小鼠細胞系正常肺組織, 在預冷的PBS液中盡量除去氣管、支氣管、血管組織, 將小鼠肺組織上面的血污用PBS清洗后, 剪成1 mm3 小塊, 用0.25%的胰酶溶液清洗一次, 繼續用 0.25%的胰酶在37 °C下攪動消化10~20 min。之后加入等量的含有10% FBS的DMEM培養基終止消化, 200 目篩網過濾后, 1 500 r/min低溫離心5 min, 去上清, 再將沉淀加入0.1% I型膠原酶在37 °C下消化10~20 min,加入含有10% FBS的DMEM培養基終止消化, 1 000 r/min離心5 min。將細胞系懸液接種于培養瓶中, 置37 °C、5% CO2的培養箱中培育40 min, 此時貼壁的為成纖維細胞, 懸浮的多數為肺泡II型上皮細胞和其他雜細胞。

將培養液吸出置于另一瓶中, 繼續在培養箱中培育 40 min, 反復2~3次, Z后吸出培養液, 800 r/min離心 5 min, 去上清, 用含10% FBS的DMEM培養基重懸沉淀細胞。接種于培養瓶置37 °C、5% CO2的培養箱中培育, 留少量細胞做免疫化學實驗, 用鼠抗SP-C 為一抗, Alexa Fluor 594標記的山羊抗小鼠IgG為二抗, 確認為肺泡II型上皮細胞系后備用。